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如何對(duì)細(xì)胞培養(yǎng)進(jìn)行快速正確的檢測(cè)
本文介紹了對(duì)培養(yǎng)貼壁細(xì)胞系進(jìn)行傳代的一般工作流程及步驟說(shuō)明。哺乳類細(xì)胞體外培養(yǎng)是在癌癥、藥物開(kāi)發(fā)、組織工程、干細(xì)胞、疾病細(xì)胞和分子生物學(xué)等生物醫(yī)學(xué)研究領(lǐng)域進(jìn)行臨床和藥物研究的重要模型。要想成功維持細(xì)胞系，需要通過(guò)控制生長(zhǎng)條件來(lái)維持細(xì)胞生理和表型的穩(wěn)定性。定期監(jiān)測(cè)細(xì)胞生長(zhǎng)，對(duì)細(xì)胞進(jìn)行傳代培養(yǎng)以確保連續(xù)性。
背 景
哺乳類細(xì)胞培養(yǎng)對(duì)臨床和藥物研究與應(yīng)用至關(guān)重要，其可用于構(gòu)建靈活的健康和疾病模型系統(tǒng)。例如在機(jī)能研究可支持電腦模擬分析并可用于替代動(dòng)物模型。
細(xì)胞增殖取決于細(xì)胞類型（從動(dòng)物組織分離的原代細(xì)胞、胚胎干細(xì)胞、自我更新細(xì)胞、穩(wěn)定永生化細(xì)胞系、轉(zhuǎn)化細(xì)胞）和培養(yǎng)條件（培養(yǎng)基、2D/3D細(xì)胞外基質(zhì)、溫度、PH值、CO2/O2濃度）。在最佳培養(yǎng)條件下可以培養(yǎng)出用于各種實(shí)驗(yàn)分析的細(xì)胞。隨著動(dòng)物細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)的進(jìn)步，細(xì)胞系逐步演變并被用于疫苗生產(chǎn)、治療性蛋白、藥物制劑和抗癌制劑。
要想成功維持哺乳類細(xì)胞系，必須在受控條件下培養(yǎng)細(xì)胞并使用特定培養(yǎng)基。此外，為保證細(xì)胞生理和表型的穩(wěn)定性，必須定期監(jiān)測(cè)細(xì)胞生長(zhǎng)狀況。通常情況下，當(dāng)細(xì)胞匯合度達(dá)到80%左右，須對(duì)細(xì)胞進(jìn)行傳代培養(yǎng)，以確保細(xì)胞生長(zhǎng)良好且健康。細(xì)胞匯合度達(dá)80%指的是培養(yǎng)皿80%的表面被細(xì)胞所覆蓋。注意：傳代培養(yǎng)細(xì)胞的最佳匯合度取決于細(xì)胞類型且可能還需優(yōu)化。
本篇文章描述了傳代培養(yǎng)貼壁細(xì)胞系的一般工作流程并附上步驟說(shuō)明和詳細(xì)圖解（見(jiàn)圖2）。
為何需要對(duì)細(xì)胞進(jìn)行傳代？
培養(yǎng)的細(xì)胞不可能無(wú)限生長(zhǎng)，原因在于在有限的空間內(nèi)細(xì)胞數(shù)量不斷增多，營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)消耗，有毒代謝物增多最終導(dǎo)致細(xì)胞死亡。此外，研究人員通常需要重復(fù)實(shí)驗(yàn)，因此需要對(duì)培養(yǎng)細(xì)胞進(jìn)行削減或擴(kuò)增。經(jīng)過(guò)傳代后細(xì)胞能生成相比原先密度更低的新細(xì)胞。去掉舊的培養(yǎng)基，將細(xì)胞轉(zhuǎn)移至新鮮培養(yǎng)基和基質(zhì)中，補(bǔ)充新鮮營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)并清除有毒代謝物能夠長(zhǎng)期維持培養(yǎng)細(xì)胞。一開(kāi)始接種細(xì)胞后，細(xì)胞生長(zhǎng)進(jìn)入遲滯期然后是對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期，此時(shí)細(xì)胞呈指數(shù)增殖，接著進(jìn)入靜止期，此時(shí)細(xì)胞生長(zhǎng)率和死亡率持平。（見(jiàn)圖1）。進(jìn)入衰亡期，細(xì)胞因缺乏營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)或培養(yǎng)條件不充足而死亡，例如細(xì)胞因匯合度過(guò)高開(kāi)始爭(zhēng)奪生存空間。
圖1：細(xì)胞生長(zhǎng)曲線：培養(yǎng)細(xì)胞的生長(zhǎng)曲線包含四個(gè)階段：生長(zhǎng)開(kāi)始前的潛伏期（遲滯期）、指數(shù)增長(zhǎng)期（對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期）、靜止期（細(xì)胞增殖速度逐漸減慢）、衰亡期（細(xì)胞因缺乏營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)以及生存環(huán)境有問(wèn)題而死亡）。應(yīng)在對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期更換培養(yǎng)基并在進(jìn)入靜止期前對(duì)細(xì)胞進(jìn)行傳代培養(yǎng)。
要使細(xì)胞處于最佳培養(yǎng)條件且維持活躍增長(zhǎng)，有必要更新培養(yǎng)基并定期進(jìn)行傳代培養(yǎng)。可根據(jù)細(xì)胞類型在對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期多次更換培養(yǎng)基。傳代培養(yǎng)的最佳時(shí)間位于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期和靜止期之間，在細(xì)胞達(dá)到密集狀態(tài)前進(jìn)行。
為何需要檢查細(xì)胞？
每日以及在傳代培養(yǎng)前檢查細(xì)胞培養(yǎng)物非常重要，以此監(jiān)測(cè)細(xì)胞健康狀況、檢查污染情況、確定細(xì)胞分離時(shí)間。首先用肉眼檢查培養(yǎng)基中是否出現(xiàn)真菌污染、培養(yǎng)基渾濁度和顆粒情況，以及通過(guò)培養(yǎng)基的顏色變化發(fā)現(xiàn)意外的pH值變化。首先用肉眼檢查培養(yǎng)基中是否出現(xiàn)真菌污染、培養(yǎng)基渾濁度和顆粒情況，以及通過(guò)培養(yǎng)基的顏色變化發(fā)現(xiàn)意外的pH值變化。之后應(yīng)使用倒置顯微鏡近距離檢查細(xì)胞整體形態(tài)和生長(zhǎng)模式。倒置顯微鏡的光學(xué)元件位于樣本下方。由于細(xì)胞附著在培養(yǎng)皿底部，從底部視角便于觀察。由于正常明場(chǎng)照明下難以觀察到大多數(shù)細(xì)胞，因此應(yīng)在100至200倍的總放大倍數(shù)和相差下進(jìn)行觀察[1]。
哺乳類細(xì)胞有很多種形態(tài)，但培養(yǎng)出的哺乳類細(xì)胞大多可分為3類：成纖維細(xì)胞【中國(guó)倉(cāng)鼠卵巢（CHO）細(xì)胞】、上皮樣細(xì)胞【人類子宮頸（HeLa）細(xì)胞】以及淋巴樣細(xì)胞【人類白血病（HL60）細(xì)胞】。此外，某些細(xì)胞系具有特定的形態(tài)特征，例如神經(jīng)細(xì)胞（SH-SY5Y）具有很長(zhǎng)的樹(shù)突。細(xì)胞形態(tài)還受細(xì)胞生命周期活動(dòng)影響。在有絲分裂過(guò)程中，許多細(xì)胞變得更圓，形成可在培養(yǎng)基中漂浮的高折射性發(fā)亮球體。死亡細(xì)胞的細(xì)胞膜完整性發(fā)生變化，細(xì)胞變得更圓，貼壁細(xì)胞從生長(zhǎng)表面分離。在顯微鏡下，死亡細(xì)胞通常不會(huì)發(fā)亮及產(chǎn)生折射，它們通常的細(xì)胞膜形態(tài)可能會(huì)發(fā)生改變
不同細(xì)胞系不僅尺寸和形狀不同，生長(zhǎng)特性也有所不同。它們要么發(fā)展成貼壁細(xì)胞（成纖維細(xì)胞和上皮細(xì)胞），要么發(fā)展成懸浮細(xì)胞（淋巴樣細(xì)胞）。大多數(shù)貼壁細(xì)胞系會(huì)生成單細(xì)胞層，附著在玻璃或經(jīng)處理的塑料基板上（例如涂有聚賴氨酸、纖連蛋白、膠原蛋白或明膠）。
如何傳代培養(yǎng)細(xì)胞？
最常見(jiàn)的傳代細(xì)胞制備方法是使用胰蛋白酶等蛋白水解酶分解細(xì)胞間及細(xì)胞與培養(yǎng)基之間的黏合。胰蛋白酶和乙二胺四乙酸的共同作用使細(xì)胞從生長(zhǎng)表面脫離。胰蛋白酶切斷將細(xì)胞固定在培養(yǎng)皿上的黏著斑，乙二胺四乙酸則作為鈣螯合劑。
根據(jù)細(xì)胞類型或下游實(shí)驗(yàn)也可使用其他蛋白酶代替胰蛋白酶，如天然膠原酶或合成消化雞尾酒溶液等。
將參與細(xì)胞間相互作用的鈣粘蛋白中的鈣成分去掉，從而分解鈣粘蛋白，將細(xì)胞分離開(kāi)來(lái)。細(xì)胞一旦失去與生長(zhǎng)表面和周圍細(xì)胞的黏合，就能輕易分離并在新的細(xì)胞培養(yǎng)皿中生長(zhǎng)。細(xì)胞一旦失去與生長(zhǎng)表面和周圍細(xì)胞的黏合，就能輕易分離并在新的細(xì)胞培養(yǎng)皿中生長(zhǎng)。圖2描述了傳代培養(yǎng)工作流程的基本步驟。在整個(gè)傳代培養(yǎng)過(guò)程中重要的是，要在無(wú)污染環(huán)境下工作。在傳代培養(yǎng)初始階段、胰蛋白酶分解過(guò)程中、細(xì)胞計(jì)數(shù)環(huán)節(jié)以及細(xì)胞分離后都要檢查細(xì)胞狀況。保持正確記錄和歸檔對(duì)于獲得一致結(jié)果和實(shí)驗(yàn)追溯同樣非常重要。
圖2：傳代培養(yǎng)工作流程中標(biāo)紅的步驟表示需要使用顯微鏡檢查。
以下實(shí)驗(yàn)計(jì)劃給出了狗腎臟細(xì)胞在90mm有蓋培養(yǎng)皿中進(jìn)行傳代培養(yǎng)的基本原則。這些細(xì)胞是從狗的遠(yuǎn)端小管上分離的上皮細(xì)胞。在培養(yǎng)過(guò)程中，細(xì)胞貼壁生長(zhǎng)，在實(shí)現(xiàn)匯合后形成由多邊形細(xì)胞構(gòu)成的單細(xì)胞層。
需要以下材料和設(shè)備：
材料：
培養(yǎng)基預(yù)熱至 37° C（狗腎臟細(xì)胞需要：MEM培養(yǎng)基加5%FCS胎牛血清、2mM谷氨酰胺、100 U/mL青霉素、100 mg/mL鏈霉素）；
預(yù)熱不含鈣鎂的PBS緩沖液；
在D-PBS緩沖液中預(yù)熱0.05%的胰蛋白酶、0.02%的乙二胺四乙酸；
臺(tái)盼藍(lán)（活體染劑）；以及
消毒用的70%乙醇或異丙醇。
當(dāng)進(jìn)行無(wú)動(dòng)物源或成分明確的細(xì)胞培養(yǎng)時(shí)，使用無(wú)血清培養(yǎng)基、FBS/FCS合成替代品及非動(dòng)物性解離劑。
設(shè)備：
帶一次性吸頭的細(xì)胞計(jì)數(shù)室移液管或微量移液管；
支持相差功能的倒置顯微鏡（DMi1，Mateo TL）；
防護(hù)服和材料；
溫度適宜的水浴槽；
37°C、含5% CO2、濕度高的培養(yǎng)箱；
離心機(jī)；
離心管；
事先標(biāo)注的培養(yǎng)皿。
狗腎臟細(xì)胞的傳代比例應(yīng)為1:10。根據(jù)細(xì)胞類型調(diào)節(jié)比例。例如原代細(xì)胞培養(yǎng)物、永生化細(xì)胞系、胚胎干細(xì)胞等可能具有不同的最佳比例。
使用徠卡DMi1傳代培養(yǎng)貼壁細(xì)胞的4步工作流程
步驟1
細(xì)胞檢查
從培養(yǎng)箱中取出細(xì)胞并放在顯微鏡下快速檢查。應(yīng)每天進(jìn)行顯微鏡檢查，確保細(xì)胞處于健康狀態(tài)（無(wú)污染、死亡細(xì)胞少）并按預(yù)計(jì)生長(zhǎng)。
在培養(yǎng)貼壁細(xì)胞時(shí)，細(xì)胞應(yīng)主要附著在培養(yǎng)皿活燒瓶底部，培養(yǎng)基應(yīng)呈粉橙色。由于培養(yǎng)基中細(xì)胞代謝物（或污染）導(dǎo)致酸化，因此酸堿指示劑酚紅呈黃色。由于培養(yǎng)基中細(xì)胞代謝物（或污染）導(dǎo)致酸化，因此酸堿指示劑酚紅呈黃色。在正常明場(chǎng)照明下難以觀察到這些細(xì)胞。切換至相差可以使細(xì)胞更容易被觀察到。如圖所示，使用DMi1，只需移動(dòng)聚光鏡環(huán)的滑塊即可選擇相差。
記錄細(xì)胞狀態(tài)對(duì)確保各實(shí)驗(yàn)結(jié)果一致十分重要。DMi1可配備攝像頭和屏幕，通過(guò)遠(yuǎn)程控制輕松實(shí)現(xiàn)成像和保存。研究人員使用Mateo TL集成攝像頭可以拍攝細(xì)胞圖像，追蹤培養(yǎng)基狀況，將圖像轉(zhuǎn)存智能設(shè)備或U盤。
比較狗腎臟細(xì)胞在明場(chǎng)照明和相差圖像中的顯示效果：相差圖像的概覽效果更好，更易于檢查細(xì)胞形態(tài)和細(xì)胞計(jì)數(shù)。
步驟2
細(xì)胞提取
用移液器將培養(yǎng)基吸取至廢物容器中。也可以使用接有真空吸液器的移液器。
使用5ml不含鈣鎂的預(yù)熱PBS緩沖液仔細(xì)沖洗細(xì)胞，沖洗3次，去除殘留培養(yǎng)基中的胎牛血清。胎牛血清及其替代物會(huì)抑制胰蛋白酶。加入3ml預(yù)熱胰蛋白酶/乙二胺四乙酸，輕輕轉(zhuǎn)動(dòng)培養(yǎng)皿使其均勻覆蓋培養(yǎng)皿底部的細(xì)胞。在37°C下培育幾分鐘即可傳代細(xì)胞。
不同細(xì)胞系需要的胰蛋白酶培養(yǎng)時(shí)間不同。為避免過(guò)度胰蛋白酶化使細(xì)胞受損，每隔幾分鐘在顯微鏡下檢查一次細(xì)胞。
輕柔地沖洗培養(yǎng)皿，并將細(xì)胞懸浮液轉(zhuǎn)移至50ml試管中，以800rpm的速度轉(zhuǎn)動(dòng)5分鐘使細(xì)胞沉降下來(lái)。吸走上層清液并在10ml新鮮培養(yǎng)基中重懸細(xì)胞，去除胰蛋白酶。
分離出的細(xì)胞應(yīng)呈圓形并在胰蛋白酶溶液中自由漂浮。細(xì)胞一經(jīng)分離，即向培養(yǎng)皿中加入5ml培養(yǎng)基，滅活胰蛋白酶。
步驟3
細(xì)胞計(jì)數(shù)
將100µL細(xì)胞懸浮液與等量的0.4%臺(tái)盼藍(lán)溶液混合。臺(tái)盼藍(lán)選擇性滲入死亡細(xì)胞的細(xì)胞膜并將其染藍(lán)，但不會(huì)被活細(xì)胞吸收。將蓋玻片置于計(jì)數(shù)表面上，準(zhǔn)備好血球計(jì)。
將移液器吸嘴置于蓋玻片邊緣輕輕擠出細(xì)胞懸浮液，將其滴加在計(jì)數(shù)室上（單位面積約4µl）。蓋玻片下的整片區(qū)域發(fā)生毛細(xì)管作用。大多數(shù)情況下，計(jì)數(shù)室有兩個(gè)計(jì)數(shù)區(qū)可各自承接液體。
將計(jì)數(shù)室放在顯微鏡載物臺(tái)上并將焦點(diǎn)集中在細(xì)胞上。方形計(jì)數(shù)網(wǎng)格樣式依計(jì)數(shù)室類型而定。圖中所示的Fuchs-Rosenthal血細(xì)胞計(jì)數(shù)板有16個(gè)區(qū)域，每個(gè)區(qū)域1平方毫米，整體被線包圍。每個(gè)正方形區(qū)域被細(xì)分為16個(gè)小正方形。如圖所示，計(jì)算一個(gè)區(qū)域內(nèi)16個(gè)正方形中的細(xì)胞總數(shù)。為避免重復(fù)計(jì)算位于大正方形邊線上的細(xì)胞，僅計(jì)算位于正方形兩條邊上的細(xì)胞。在本例中，觸及正方形上方和左側(cè)標(biāo)紅邊線（加粗紅線）的細(xì)胞應(yīng)被計(jì)入。觸及下方和右側(cè)紅色邊線的細(xì)胞應(yīng)不被計(jì)入。計(jì)算計(jì)數(shù)室5個(gè)1平方毫米區(qū)域內(nèi)的活細(xì)胞和死亡細(xì)胞。要計(jì)算最終結(jié)果，需要合計(jì)5個(gè)正方形的計(jì)數(shù)結(jié)果。為求得更精確的測(cè)算結(jié)果，也可以計(jì)算計(jì)數(shù)室其他正方形（大于5個(gè)）的細(xì)胞數(shù)量。
使用以下公式可計(jì)算細(xì)胞濃度：
此外還可使用細(xì)胞自動(dòng)計(jì)數(shù)器。
步驟4
細(xì)胞植入
用移液器將所需細(xì)胞量（合適的細(xì)胞數(shù)量）以所需分離率（此處為1:10）吸取至新的培養(yǎng)皿中，在各培養(yǎng)皿中加入所需容積的培養(yǎng)基（10ml）。注意細(xì)胞類型、細(xì)胞分離日期以及培養(yǎng)皿蓋子上的細(xì)胞傳代次數(shù)。將細(xì)胞放回37°C培養(yǎng)箱中。
將細(xì)胞放置一晚，讓其恢復(fù)和沉降。24小時(shí)后使用顯微鏡檢查細(xì)胞形狀、黏著性及是否存在污染。
細(xì)胞應(yīng)附著在培養(yǎng)皿底部并已開(kāi)始生長(zhǎng)和分裂。細(xì)胞應(yīng)附著在培養(yǎng)皿底部并已開(kāi)始生長(zhǎng)和分裂。讓細(xì)胞生長(zhǎng)直至匯合并準(zhǔn)備好進(jìn)入實(shí)驗(yàn)或開(kāi)始下一輪傳代培養(yǎng)。
參考文獻(xiàn)：
1.W. Ockenga, Phase Contrast: Making Unstained Phase Objects Visible, Science Lab (2011) Leica Microsystems.
